Uso do [18F]FDG/PET para avaliar o efeito anti-inflamatório do ácido rosmarínico em modelo murino de implante de esponja
DOI:
https://doi.org/10.15392/2319-0612.2024.2490Palavras-chave:
[18F]FDG, agentes antiinflamatórios, ácido rosmarínico, modelo de esponja, MicroPETResumo
A tomografia por emissão de pósitrons (PET) é uma das técnicas de imagem mais sensíveis e eficazes para detectar concentrações muito baixas de radiotraçadores específicos. É adequado para analisar informações bioquímicas, metabólicas, fisiológicas e funcionais em nível molecular in vivo e de forma não invasiva. PET utilizando 2-desoxi-2[18F]-fluoro-D-glicose ([18F]FDG) pode identificar focos inflamatórios e outras patologias, bem como monitorar a eficácia do tratamento. Esta técnica pode ser utilizada para estudar o ácido rosmarínico (AR), um composto natural com efeitos antioxidantes e antiinflamatórios promissores. Assim, o objetivo deste estudo é investigar o potencial antiinflamatório do AR e a eficácia do PET/[18F]FDG na localização da inflamação e na avaliação da resposta ao tratamento. Para tanto, foi utilizado um modelo de implante de esponja murina. Todos os experimentos foram realizados com camundongos BALB/c machos, entre 6 e 9 semanas de idade, pesando entre 18 e 22 g, com 5 animais por grupo (totalizando 10 animais ao longo do estudo). Metodologia: Os ratos foram implantados com discos de poliuretano semelhantes a esponjas para induzir inflamação local. Os animais foram divididos em dois grupos experimentais: os tratados com veículo e os tratados com AR. PET scans com [18F]FDG foram realizados para avaliar o processo inflamatório. Resultados: Os resultados obtidos com [18F]FDG mostraram diminuição dos infiltrados de células inflamatórias na esponja após tratamento com AR. Conclusão: O uso de [18F]FDG demonstrou sua eficácia na avaliação quantitativa do processo inflamatório no modelo de esponja subcutânea de camundongo, bem como no efeito antiinflamatório da AR.
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Referências
Li, Y., Wang, Q., Wang, X., Li, X., Wu, H., Wang, Q., & Li, X. F. (2020). Expert Consensus on clinical application of FDG PET/CT in infection and inflammation. Annals of Nuclear Medicine, 34, 369-376.
RAHMAN, W. T. et al. The impact of infection and inflammation in oncologic 18F-FDG PET/CT imaging. Biomedecine & pharmacotherapie [Biomedicine & pharmacotherapy], v. 117, n. 109168, p. 109168, 2019.
JAMAR, F. et al. EANM/SNMMI guideline for18F-FDG use in inflammation and infection. Journal of Nuclear Medicine, v. 54, n. 4, p. 647–658, 2013.
CALDER, P. C.; DIMITRIADIS, G.; NEWSHOLME, P. Glucose metabolism in lymphoid and inflammatory cells and tissues. Current opinion in clinical nutrition and metabolic care, v. 10, n. 4, p. 531–540, 2007.
MARTINEAU, P. et al. Assessing cardiovascular infection and inflammation with FDG-PET. American Journal of Nuclear Medicine and Molecular Imaging, v. 11, n. 1, p. 46, 2021.
QIAO, S. et al. Rosmarinic acid inhibits the formation of reactive oxygen and nitrogen species in RAW264.7 macrophages. Free radical research, v. 39, n. 9, p. 995–1003, 2009.
YOUN, J. et al. Beneficial effects of rosmarinic acid on suppression of collagen induced arthritis. The journal of rheumatology, v. 30, n. 6, 2003.
LUAN, H. et al. Rosmarinic acid protects against experimental diabetes with cerebral ischemia: relation to inflammation response. Journal of neuroinflammation, v. 10, n. 1, 2013.
ROCHA, J. et al. Anti‐inflammatory effect of rosmarinic acid and an extract of Rosmarinus officinalis in rat models of local and systemic inflammation. Basic & clinical pharmacology & toxicology, v. 116, n. 5, p. 398–413, 2015.
PEREIRA, J. M. et al. Use of [18F]FLT/PET for assessing the tumor evolution and monitoring the antitumor activity of rosmarinic acid in a mouse 4T1 breast tumor model. Brazilian Journal of Radiation Sciences, v. 11, n. 3, p. 01–23, 2023.
FARIA ALMEIDA, F. A. DE et al. KETO[18F]FDG -VAP-P1: In vivo studies of a potential PET radiotracer for diagnosis of inflammation. Applied radiation and isotopes: including data, instrumentation and methods for use in agriculture, industry and medicine, v. 192, n. 110547, p. 110547, 2023.
CASTRO, P. R. et al. Kinetics of implant-induced inflammatory angiogenesis in abdominal muscle wall in mice. Microvascular research, v. 84, n. 1, p. 9–15, 2012.
FERREIRA, M. A. N. D. et al. Sponge‐induced angiogenesis and inflammation in PAF receptor‐deficient mice (PAFR‐KO). British journal of pharmacology, v. 141, n. 7, p. 1185–1192, 2004.
GUABIRABA, R. et al. Blockade of cannabinoid receptors reduces inflammation, leukocyte accumulation and neovascularization in a model of sponge-induced inflammatory angiogenesis. et al [Inflammation research], v. 62, n. 8, p. 811–821, 2013.
CASSINI-VIEIRA, P. et al. Estimation of wound tissue neutrophil and macrophage accumulation by measuring myeloperoxidase (MPO) and N-acetyl-β-D-glucosaminidase (NAG) activities. Bio-protocol, v. 5, n. 22, 2015.
SANTOS, E. V. DOS et al. Applicability of [18F]FDG/PET for investigating rosmarinic acid preconditioning efficacy in a global stroke model in mice. Brazilian Journal of Pharmaceutical Sciences, v. 59, p. e21555, 2023.
LANNA, M. F. et al. Kinetics of phenotypic and functional changes in mouse models of sponge implants: Rational selection to optimize protocols for specific biomolecules screening purposes. Frontiers in bioengineering and biotechnology, v. 8, 2020.
CAO, W. et al. Rosmarinic acid inhibits inflammation and angiogenesis of hepatocellular carcinoma by suppression of NF-κB signaling in H22 tumor-bearing mice. Journal of pharmacological sciences, v. 132, n. 2, p. 131–137, 2016.
JIANG, K. et al. Anti-inflammatory effects of rosmarinic acid in lipopolysaccharide-induced mastitis in mice. Inflammation, v. 41, n. 2, p. 437–448, 2018
HUANG, S.-S.; ZHENG, R.-L. Rosmarinic acid inhibits angiogenesis and its mechanism of action in vitro. Cancer letters, v. 239, n. 2, p. 271–280, 2006.
ANDRADE, S. P.; FERREIRA, M. A. N. D. The sponge implant model of angiogenesis. Em: Methods in Molecular Biology. New York, NY: Springer New York, 2016. v. 1430p. 333–343.
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